谷胱甘肽-瓊脂糖凝膠 4B C10H17N3O6S
谷胱甘肽-瓊脂糖凝膠 4B C10H17N3O6S 特性: 粒度：45-165µm 流速：75cm/h 工作PH：4-10 耐壓：0.3Mpa 載量：＞5mg 谷胱甘肽 S-轉移酶
谷胱甘肽-瓊脂糖凝膠 4B C10H17N3O6S
pGEX載體表達的外源蛋白與谷胱甘肽S-轉移酶融合，因此可以通過谷胱甘肽-瓊脂糖親和層析進行純化。GSTs是一類以谷胱甘肽（γ-谷氨酰半胱氨酰甘氨酸）作為底物，通過形成硫醇尿酸失活毒性小分子的酶。由于GST對底物的親和力是亞毫摩爾級的，因此谷胱甘肽固化于瓊脂糖形成的親和層析樹脂對GST及其融合蛋白的純化效率很高?？梢杂煤坞x谷胱甘肽的緩沖液洗脫結合GST融合蛋白。樹脂用3mol/L NaCl的緩沖液再生。谷胱甘肽瓊脂糖對GST融合蛋白的結合能力很強（每毫升柱床體積的樹脂能結合8毫克融合蛋白）。
特性: 粒度：45-165µm 流速：75cm/h 工作PH：4-10 耐壓：0.3Mpa 載量：＞5mg 谷胱甘肽 S-轉移酶
使用說明：
谷胱甘肽樹脂的處理:
1.輕輕顛倒盛有谷胱甘肽-瓊脂糖樹脂的容器，將樹脂混成勻漿。
2.取部分勻漿放入15mL聚丙烯管（每100mL 細菌培養(yǎng)物大約需要2mL 勻漿）。
3.4℃ 500 g離心5分鐘，小心去掉上清。
4.在樹脂中加入10倍柱床體積預冷的PBS，顛倒數次混勻，4℃ 500 g離心5分鐘，小心去掉上清。
5.每毫升樹脂加入1毫升冷的PBS，制成50%勻漿，顛倒數次，混合均勻，懸液冰上放置待用。制備細胞抽提物：
6.每100毫升培養(yǎng)物的細胞沉淀重懸于4mL PBS緩沖液中。
7.加入溶菌酶至終濃度為1mg/mL,冰上放置30分鐘。
8.用針筒將10mL 濃度為0.2%的TritonX-100 強行注入黏稠的細胞裂解物中，劇烈振動數次混勻。加入DNase和RNase至終濃度5ug/mL, 4℃振動溫育10分鐘，4℃ 3000 g離心30分鐘，去除不溶性細胞碎片，上清轉移到一只新管中，加入DTT至終濃度1mmol/L。純化融合蛋白：
9.細胞裂解物與適量50%谷胱甘肽-瓊脂糖樹脂勻漿混和，每100毫升細菌培養(yǎng)物加2mL樹脂，于室溫輕搖30min。
10.混合物于4℃以500 g離心5分鐘，小心去掉上清并留樣少許進行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳。
11.沉淀中加入10倍柱床體積的冷的PBS，顛倒離心管數次混勻，洗去未與樹脂結合的蛋白。
12.4℃以500 g離心5分鐘，小心去掉上清并留樣少許進行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳。
13.重復步驟11和12兩次。
14.結合的GST融合蛋白可用谷胱甘肽洗脫液洗脫，也可用凝血酶、腸激酶或Xa 因子切割，釋放靶蛋白。
用谷胱甘肽洗脫融合蛋白：
15.沉淀中加入1倍柱床體積的谷胱甘肽洗脫緩沖液，室溫輕輕攪動10min，洗脫樹脂上結合的蛋白。
16.4℃以500 g離心5分鐘，上清（含洗脫的融合蛋白）移至新管中。
17.重復步驟a和b兩次，合并3次上清。蛋白酶解從結合的GST融合蛋白上回收靶蛋白：
18.在結合了融合蛋白的樹脂中加入凝血酶、腸激酶或Xa 因子（根據融合蛋白中的位點選擇），每mL樹脂加入50單位溶于1mLPBS的蛋白酶。顛倒離心管數次混勻，室溫下振蕩2—16小時。用小規(guī)模實驗確定精確時間。
19.4℃以500 g離心5分鐘，上清小心移至新管中。（GST仍結合在樹脂上，而靶蛋白在上清中，蛋白酶也在上清中，仍需要分離）
20.10% SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳分析每一步樣品的蛋白質組成。試劑配制：谷胱甘肽洗脫緩沖液：10mmol/L還原型谷胱甘肽，50mmol/L Tris-Cl (pH8.0)
